{"id":300,"date":"2023-03-22T20:06:20","date_gmt":"2023-03-22T19:06:20","guid":{"rendered":"http:\/\/a-etna.ch\/scienceblog\/?p=300"},"modified":"2025-09-04T14:05:03","modified_gmt":"2025-09-04T12:05:03","slug":"tipps-zum-bakterienexperiment","status":"publish","type":"post","link":"https:\/\/a-etna.ch\/scienceblog\/tipps-zum-bakterienexperiment\/","title":{"rendered":"Laborarbeit mit Bakterien"},"content":{"rendered":"\n<h3 class=\"wp-block-heading\">Grunds\u00e4tzliche Tipps<\/h3>\n\n\n\n<ul class=\"wp-block-list\">\n<li>Eine gute Planung inkl. pr\u00e4zisem Zeitplan ist wesentlich f\u00fcr ein effizientes und erfolgreiches Arbeiten.\n<ul class=\"wp-block-list\">\n<li>Beginnen Sie die Messungen zu Wochenbeginn und messen Sie t\u00e4glich, Ende  Woche ist das Experiment wahrscheinlich vorbei. Am Wochenende wird nicht  gemessen.  <\/li>\n\n\n\n<li>Vergessen Sie nicht die Zeit f\u00fcr das Autoklavieren und f\u00fcr m\u00f6gliche Vorkulturen <\/li>\n<\/ul>\n<\/li>\n\n\n\n<li>Testen Sie besser nur eine Substanz (+ Kontrolle), daf\u00fcr in drei Ans\u00e4tzen. Dann k\u00f6nnen Sie aus den Messwerten Mittelwerte berechnen. Und falls etwas schief geht, haben Sie Reserven. <\/li>\n\n\n\n<li>Vergessen Sie nicht die allererste OD-Messung, gleich nachdem sie die Bakterienvorkultur dazugegeben haben. Die weiteren Messungen beziehen sich dann auf diese, da Sie ja das Wachstum ab diesem Zeitpunkt interessiert.<\/li>\n\n\n\n<li>F\u00fchren Sie das Laborjournal. Lassen Sie diese im S210 (nicht nach Hause nehmen)<\/li>\n\n\n\n<li>Es hat unterschiedliche Waagen im Raum. Nehmen Sie die pr\u00e4ziseren mit 2 Nachkommastellen (also 0.01 g)\u00a0<\/li>\n\n\n\n<li>Sie haben stets Zugang zum S210, r\u00e4umen Sie nach getaner Arbeit auf!  <\/li>\n<\/ul>\n\n\n\n<p class=\"wp-block-paragraph\">Beachten Sie unbedingt die <a href=\"https:\/\/a-etna.ch\/scienceblog\/?p=451\">Laborregeln<\/a>.<\/p>\n\n\n\n<h3 class=\"wp-block-heading\">Voll- oder Minimalmedium? Wo finde ich Flaschen und Chemikalien?<\/h3>\n\n\n\n<ul class=\"wp-block-list\">\n<li>\u00dcberlegen Sie sich gut, welches der beiden N\u00e4hrmedien Sie brauchen. Alle ben\u00f6tigten Chemikalien finden Sie im Schrank &#8222;Mikrobiologie&#8220; in der Ecke im S210.\u00a0 Das Medium mischen m\u00fcssen Sie jedoch selbst.<\/li>\n\n\n\n<li>Die Medien k\u00f6nnen Sie in einem Becherglas mischen, aber am Ende m\u00fcssen sie in einer Schottflasche sein (Flasche mit blauem Deckel). Nur diese k\u00f6nnen wir autoklavieren. Sie finden Sie im Gang im Schrank B. Weiteres Material finden Sie ebenfalls in diesen Schr\u00e4nken. Achten Sie darauf, dass Sie die Flasche nur zu etwa einen Drittel f\u00fcllen, also lieber eine Nummer gr\u00f6sser nehmen.<\/li>\n\n\n\n<li>Sehr kleine Mengen (wie f\u00fcr das Minimalmedium) k\u00f6nnen Sie kaum genau abw\u00e4gen. Machen Sie eine Stockl\u00f6sung: Abw\u00e4gbare Menge in Wasser aufl\u00f6sen (z.B. 1 g in 100 ml Wasser) und daraus die notwendige Menge pipettieren. Das ist viel genauer.\u00a0<\/li>\n\n\n\n<li>Mehr Informationen und Rezepte finden Sie im <a href=\"https:\/\/a-etna.ch\/scienceblog\/?p=432\">Beitrag Voll- oder Minimalmedium<\/a>.<\/li>\n\n\n\n<li>Denken Sie daran, dass das Medium vor der Verwendung von uns autoklaviert werden muss. Das dauert einige Stunden. <\/li>\n<\/ul>\n\n\n\n<h3 class=\"wp-block-heading\">Pipetten und andere Werkzeuge<\/h3>\n\n\n\n<ul class=\"wp-block-list\">\n<li>F\u00fcr Mengen \u00fcber 1 ml nehmen Sie eine Glaspipette oder einen Messzylinder.<\/li>\n\n\n\n<li>Glaswaren finden Sie im S210 oder in den Schr\u00e4nken zwischen dem S203 und S204.<\/li>\n\n\n\n<li>F\u00fcr die OD-Messungen nehmen Sie die durchsichtigen Einwegpipetten, Sie m\u00fcssen nur ca. 1 ml entnehmen.<\/li>\n\n\n\n<li>Falls die Lehrpersonen Ihnen die Erlaubnis gaben, d\u00fcrfen Sie eine der teuren <a href=\"https:\/\/a-etna.ch\/scienceblog\/?p=436\">Pr\u00e4zisionspipetten <\/a>nehmen, gehen Sie aber nach Anleitung vor.<\/li>\n<\/ul>\n\n\n\n<h3 class=\"wp-block-heading\">Bakterien wachsen lassen<\/h3>\n\n\n\n<p class=\"wp-block-paragraph\">Arbeiten Sie wenn immer m\u00f6glich mit Fl\u00fcssigkulturen, da Sie bei diesen pr\u00e4zise die OD messen k\u00f6nnen. Falls Sie wasserunl\u00f6sliche Stoffe testen (z.B. \u00e4therische \u00d6le), Milch oder Stoffe mit einer sehr starken Eigenfarbe, verwenden Sie besser <a href=\"https:\/\/a-etna.ch\/scienceblog\/?p=443\">N\u00e4hrb\u00f6den<\/a>. <\/p>\n\n\n\n<p class=\"wp-block-paragraph\">Arbeiten Sie mit Fl\u00fcssigmedien, so m\u00fcssen Sie die <a href=\"https:\/\/a-etna.ch\/scienceblog\/?p=448\">OD messen<\/a>. Starten Sie mit einer Vorkultur:<\/p>\n\n\n\n<h4 class=\"wp-block-heading\">Vorkulturen<\/h4>\n\n\n\n<ul class=\"wp-block-list\">\n<li>Sie erhalten von uns sogenannte Vorkulturen: <em>E. coli<\/em>&nbsp;konzentriert in einem Vollmedium. Sie entnehmen davon ca. 5% bezogen auf Ihre L\u00f6sung (z.B. 0.5 ml auf 10 ml Gesamtvolumen) um Ihre Kulturen anzuimpfen.<\/li>\n\n\n\n<li>Achten Sie darauf, stets aus der gleichen Vorkultur zu nehmen und f\u00fcr alle Ihre Ans\u00e4tze das gleiche Volumen. Notieren Sie das in Ihr Laborjournal. Da sich die Bakterien mit der Zeit absetzten, ist es wichtig, dass Sie <strong>die Vorkultur vorher sch\u00fctteln<\/strong>.<\/li>\n\n\n\n<li>Sie finden diese Vorkulturen auf dem Tisch im S210. Hier finden Sie auch alle ben\u00f6tigen Werkzeuge sowie leere R\u00f6hrchen. Bitte lassen Sie Ihre R\u00f6hrchen angeschrieben auf diesem Tisch.<\/li>\n\n\n\n<li>Sie k\u00f6nnen bereits beim Medien mischen Ihre Tubes\/R\u00f6hrchen f\u00fcr sich nehmen und beschriften und beim Schild AETNA hinstellen. Dann brauchen Sie weniger Zeit beim Start. <\/li>\n\n\n\n<li>Verwenden Sie die blauen Molekularpipetten oder die Plastik-Einwegpipetten und geben Sie sie danach in den Kunststoff-Sack zur Entsorgung.<\/li>\n<\/ul>\n","protected":false},"excerpt":{"rendered":"<p>Grunds\u00e4tzliche Tipps Beachten Sie unbedingt die Laborregeln. Voll- oder Minimalmedium? Wo finde ich Flaschen und Chemikalien? 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